geneticist12 の回答履歴

転写因子の結合配列が一覧になっている、または転写因子の名前などから結合配列が簡単に検索できるサイトをご存知有りませんか？よろしければ教えて頂けないでしょうか。

fungistatic の意味をおしえてください。 以下は原文です。 The fungistatic effect was attributed to lactic and, especially, acetic acids produced by lactic acid bacteria.

動物の行動がワンパターンであったり特定の鍵刺激でのみ行動が解発されることの生物学的な意味を教えてください。よろしくお願いします。

大阪医大で発見された組換による血液型の遺伝子の突然変異について質問ですが、Ｏ型とＢ型の夫婦から一度遺伝子の組換でＡ型の子供が生まれたら、次にこの夫婦が産む子供も組換でＡ型になる確率が高くなるのでしょうか？また、これと同じ組換がＡ型同士の夫婦や、Ｏ型とＡ型の夫婦の子供におこってＢ型の子供が生まれた場合はどうでしょうか？ごくまれに起こることがあると書かれていたのですが、一度この組換が起きてしまったら次に産まれる子供にも起きやすくなるのかどうか？ということが気になって夜も眠れないくらい悩んでいるので、どなたか詳しい方、御回答お願いします。

こんにちは。単純な質問です。 市販の塩酸から2Nの塩酸を100ml作りたいのですが、わかりません。 私の考えでは、ドラフト内で67mlの水に33mlの塩酸を加えるというものです。恐らく間違っていると思います。よろしくお願いします。

ショウジョウバエの染色体地図を三点交雑の方法を用いて作成するには、遺伝子型がヘテロの雌の個体を検定交雑にかける必要がある。 これは正しい文のようですが、検定交雑って劣性ホモをかけるのではないのでしょうか？ これは伴性遺伝で、伴性遺伝の場合は特別ということでしょうか？ よろしくお願いします。

マウスを用いて免疫系関連の研究をしている修士2年です。研究室3年目にして恥ずかしいのですが質問です。 現在、ある内分泌器官を、DABを用いた酵素抗体法（ABC法）で染めて、あるペプチドを産生している細胞の頻度及び分布を調べようと思っています。用意した物とプロトコルは以下です。 ・組織サンプル（ブアン固定→パラフィン包埋→4μm切片） ・Elite ABC kit（内容：Blocking用Goat血清、biotin結合2次抗体、ABC溶液） ・1次抗体（Rabbit anti-（そのペプチド）antibody） プロトコル・・・通常の脱パラ、浸水化、抗原賦活化（一応）、内因性ペロキシダーゼ除去→kitのプロトコル（1次抗体は4℃o/n） この1次抗体は、ある先生に紹介されて知り合った他大のA教授に分与していただいたものです。A教授とは直接お会いしたことはなく、メールや参考文献も自分の指導教官であるB教授を通して受け取っています。A教授はこの1次抗体を自分で作成（既知のアミノ酸配列からペプチドを合成→ウサギに投与→血清から精製）して、その抗体を用いた染色で論文を沢山出しているような方です。その論文を参考にして、今回のプロトコルを組んで染色してみたのですが、全然うまくいきません。組織内の細胞がところどころポツポツ染まるはずなのに、赤血球と血管内皮細胞以外の組織細胞全部がベッタリと染まってしまうのです。A教授の染色で私の染色と異なる点は、動物がラットであること（問題のペプチドは両種で保存されていることが分かっている）、kitを使っていないこと（ABC法ではなくPAP法、発色は同じくDAB）のみです。 こんなことはA教授に聞けばいいのですが、うちのB教授は少々プライドが高いところがあって難しそうなのです。それに、B教授はもともと免疫染色が得意ではないようです。B教授は今のベッタリ染色像が正しい染色像だと思っていて、このまま私の論文まで持っていくつもりみたいですが、色々な参考文献を見ている私としては、このベッタリ具合は絶対何かおかしいのです。（でもB教授は私の意見はお構いなしです(ノд・。) ）だって本当は、下垂体のACTH細胞くらいくっきり染め分けることが出来る抗体なんです。先入観を差し引いても、ラットとマウスでこんなに違うとは到底思えません。 さて、長々と読んでいただいてありがとうございます。。。質問は以下です。 1．私の染色方法やkitで、「もしかしてここのミスかも・・・」と気になる点があったら教えてください。（モノクローナル抗体を使った染色にはもともと不慣れです。） 2．指導教官であるB教授に「待った！」をかけるために、いい策はないでしょうか？？？（この質問に関してはカテ違いかもしれませんが・・・。）

マウスを用いて免疫系関連の研究をしている修士2年です。研究室3年目にして恥ずかしいのですが質問です。 現在、ある内分泌器官を、DABを用いた酵素抗体法（ABC法）で染めて、あるペプチドを産生している細胞の頻度及び分布を調べようと思っています。用意した物とプロトコルは以下です。 ・組織サンプル（ブアン固定→パラフィン包埋→4μm切片） ・Elite ABC kit（内容：Blocking用Goat血清、biotin結合2次抗体、ABC溶液） ・1次抗体（Rabbit anti-（そのペプチド）antibody） プロトコル・・・通常の脱パラ、浸水化、抗原賦活化（一応）、内因性ペロキシダーゼ除去→kitのプロトコル（1次抗体は4℃o/n） この1次抗体は、ある先生に紹介されて知り合った他大のA教授に分与していただいたものです。A教授とは直接お会いしたことはなく、メールや参考文献も自分の指導教官であるB教授を通して受け取っています。A教授はこの1次抗体を自分で作成（既知のアミノ酸配列からペプチドを合成→ウサギに投与→血清から精製）して、その抗体を用いた染色で論文を沢山出しているような方です。その論文を参考にして、今回のプロトコルを組んで染色してみたのですが、全然うまくいきません。組織内の細胞がところどころポツポツ染まるはずなのに、赤血球と血管内皮細胞以外の組織細胞全部がベッタリと染まってしまうのです。A教授の染色で私の染色と異なる点は、動物がラットであること（問題のペプチドは両種で保存されていることが分かっている）、kitを使っていないこと（ABC法ではなくPAP法、発色は同じくDAB）のみです。 こんなことはA教授に聞けばいいのですが、うちのB教授は少々プライドが高いところがあって難しそうなのです。それに、B教授はもともと免疫染色が得意ではないようです。B教授は今のベッタリ染色像が正しい染色像だと思っていて、このまま私の論文まで持っていくつもりみたいですが、色々な参考文献を見ている私としては、このベッタリ具合は絶対何かおかしいのです。（でもB教授は私の意見はお構いなしです(ノд・。) ）だって本当は、下垂体のACTH細胞くらいくっきり染め分けることが出来る抗体なんです。先入観を差し引いても、ラットとマウスでこんなに違うとは到底思えません。 さて、長々と読んでいただいてありがとうございます。。。質問は以下です。 1．私の染色方法やkitで、「もしかしてここのミスかも・・・」と気になる点があったら教えてください。（モノクローナル抗体を使った染色にはもともと不慣れです。） 2．指導教官であるB教授に「待った！」をかけるために、いい策はないでしょうか？？？（この質問に関してはカテ違いかもしれませんが・・・。）

大学でcell を扱う実験をしています。 生細胞内の核のみを染色したいです。 ここでDAPI とほぼ同様の性質で、 Exitation/Emission が違う代替品はありますでしょうか。 具体的には、DAPI は, 358 nm / 461 nm のようですが、 私がセル内でみたい化合物も同様の範囲におさまっています。 そこで、DAPIと似た性質で、たとえば 480 nm / 520 nm をもつ (GFPのような蛍光性質）核染色物質がないかご存じないでしょうか？ なるべくなら、細胞固定せず、生細胞をみたい（膜透過性）です。 どのような方法でも良いので、358 nm / 461 nm 以外に 蛍光性質をもち、生細胞の核のみ(DNAのみ）を染色する 方法があれば、ぜひともご教示下さい。 よろしくお願い申し上げます。

植物のカラスムギ属のA genomeとD genomeについての論文を読むことになったのですが、AとDゲノム、ACD六倍体、ＡＢ四倍体とは一体なんなのでしょうか？ どなたかお分かりになる方はいらっしゃらないでしょうか？ どうかよろしくお願いします。

マックosX 10.3.9使用なのですが、firefox2からfirefox3に無料ダウンロードがうまくいかず！新旧とも、まったく立ち上がらなくなってしまいました。

アドレナリンとエピネフリンの言葉をよく使いますが、使い分け方がいまいちわかりません。同じものの別名という判断でいいのでしょうか？

ClamXavでスキャンしたところ、下の２つが検出されました。 .rtfd/extnews_aircon1210.jpg .rtfd/TXT.rtf というファイルが感染しているみたいなのですが、Spotlightを使っても出てきません。 それを見つけるソフト、そしてこの感染しているファイルの読み方などを教えてください。

ClamXavでスキャンしたところ、下の２つが検出されました。 .rtfd/extnews_aircon1210.jpg .rtfd/TXT.rtf というファイルが感染しているみたいなのですが、Spotlightを使っても出てきません。 それを見つけるソフト、そしてこの感染しているファイルの読み方などを教えてください。

(1)ある実験において、2種類の制限酵素を用いてあるDNAを切断しました（AとBとします）。16時間とかなり長く反応時間を与えたため、DNAバンドはゲルの下方に確認され、『これはスター活性が起きた』と判断しました。 (2)後日。 スター活性を恐れた自分は反応時間を10時間以内に抑え、同条件でもう一度制限酵素処理を試みました。結果、前回よりもゲル上方にバンドが確認でき、完全ではないが『スター活性はある程度改善された』と判断しました。 (3)そして昨日。 制限酵素A抜きに、BだけでDNAを切断する反応を時間別に行ないました(1h,3h,6h,9h,16h)。これは『制限酵素Bがスター活性を起し始める』と考えられる反応時間を明らかにするため行ないました。結果、長時間反応させたにも関わらず、どの反応時間でも問題なく切断が行なわれていました。 以上の実験より、自分はこの様に考えています。 ・(1)(2)において。２種類の制限酵素を用いたため、グリセロール濃度が上昇した。よってスター活性が起こり易く、反応時間別の影響が大きい。 素人考えですが、自分なりの解釈です。その他に考えられる理由や経験をお持ちの方、ぜひお聞かせください。m(__)M

よろしくお願いいたします。 人の核相は２ｎ＝４６ですよね。 倍数体はこれが3ｎになったりするということですか？ 人がもしこうなれば体細胞分裂も減数分裂もどうなるの？ という感じですが、種無しスイカやパン小麦がなどの植物が 普通に生きているのが不思議です。 なぜでしょうか？ 長い期間悩んでいます。 わかりやすい詳しいご解説やサイトを紹介してください よろしくお願いいたします。

Assume we are cloning a 1.5 kilobase fragment generated by cleavage of genomic DNA with BamH1 restriction enzyme into a plasmid which has a single site where it can be cleaved with the same restriction enzyme. The original plasmid is 5 kilobase in length. Following insertion of the plasmid and treastment with DNA ligase, you exmaine the size of your consruct electrophoretically. To you surprise, you find plasmids with sizes of 5, 7.5, 9, 10, 12, and 15 kilobase. Explain how these results might have been obtained?　Can you think of any way in which the problem might have been prevented? この問題がテストで出たんですがよくわかりませんでした。 この問題は要するに、元々のプラスミドにBamH1で切られるサイトが何個あって、その場所はどこかってことを聞いてるんですか？

教えていただきたいのですが、 免疫染色に使用するＴＢＳを（ｐｈ７．６）自分たちで調整して使っていますが、 普段は冷蔵庫に保存してあるＴＢＳをたまに使用するときにたまたまｐｈを試験紙にて調べるとアルカリに変化しています。あまりにｐｈがずれていると染色結果に影響を及ぼすので不安なのです。これはなぜこういうことが起こるか、又防止するには対策法を、ご存知でしたらご教授いただきたいです。

このたび目的の遺伝子をpGEXに導入し融合蛋白質を作ったのですがどうも出来た蛋白質は封入体の形として存在しているようです。 出来た蛋白質を使いウサギで抗体を作ろうと思っているのですが、話によるとこの場合ゲルから切り出しそれを使えばいいと言われたのですがあまり理解が出来ません。 まず今回得た蛋白質をSDS-PAGEで泳動したものを切り出すと言われたのですがなぜ蛋白質が変性してしまったものを使えるのでしょうか。 またゲルを切り出す方法、その後の作業はどのようにすればいいのでしょうか。

久しぶりに、戸棚を探し回って、 セントルイス交響楽団の演奏でボレロを聴いています。 （海外盤なので指揮者が読めません。涙） もっと、重厚で、テンポも遅めの演奏が聴きたいなあ、と思いました。 何かお薦めの演奏がありましたら、ご教授ください。 よろしくお願いします！！