geneticist12 の回答履歴

ショウジョウバエについて素人なので、論文を読んでいて遺伝子型の表記がいつも良くわかりません。なんとなくは理解できるのですが、、 論文にこのような表記がありました。 w; hsGal4/+; UAS-dFOXO/+ この掛けあわせで、hs-Gal4/UAS-dFOXOのF1が出来るのはわかるのですが、wは野生型のことなんでしょうか？あと「；」や「,」、「/」はどのようなときに使われるのでしょうか？ 煩雑な文章になってしまいましたが、どんぞよろしくお願いします。

一般に、多楽章形式にせよ、単楽章形式にせよ、短調の出だしのものも長調で完結するというパターンが多い気がします。夜から朝へと明るく希望的に終わりたいというのが人間本能かもしれませんが、あえて、長調で始まるが、短調で終わってしまうという、朝から夜への曲と言うのはあるのでしょうか？多楽章でも単楽章でもかまわないので、ご存知でしたら教えていただきたく存じます。

久しぶりに、戸棚を探し回って、 セントルイス交響楽団の演奏でボレロを聴いています。 （海外盤なので指揮者が読めません。涙） もっと、重厚で、テンポも遅めの演奏が聴きたいなあ、と思いました。 何かお薦めの演奏がありましたら、ご教授ください。 よろしくお願いします！！

アマチュアオーケストラでクラリネットを吹いている者です。 こんど所属オケでピーターと狼をやることになり、昨日譜面が配られました（KALMUS版）。 クラリネットのパート譜はin Bで書かれてましたが、有名な猫のテーマで最低音が実音C#（in Bの譜面でレ#）が出てくるので、 B管では出せません。 知人に聞いた話では、in Aのパート譜が一般的によく目にすると言われました。 スコア（日本楽譜出版社のミニスコア）を見てみたら、クラリネットは実音つまりin Cで書いてありました。 プロコフィエフはC管クラリネットを想定してたんでしょうか。で、 楽器の音域を知らずに実音C#を書いてしまったんでしょうか。 それともA管で吹くことを想定して、スコアだけ実音で書いたんでしょうか。 KAlMUS版パート譜がin Bだったので、もともとは何管で吹くのが普通なのか、わからなくなってしまいました。 プロオケ・アマオケ問わず、演奏される頻度の高い曲ですが、 一般的にはどのようにされていることが多いのでしょうか。 ご存知の方、ご教示よろしくお願い申し上げます。

いつもこのカテ、とても参考にしている者です。 さて、表題の件です。 １．シベリウス交響曲に詳しい方、大好きな方！！、はまっている方 彼の各交響曲のツボ、ポイントをお聞かせいただけないでしょうか。 ２．中でも　コレダントツ　一押し！！というものがございましたら ぜひともお教えいただけないでしょうか。 一般的に有名なものと交響曲は有名な２番しか聴いたことが無く これから色々聴いてみようかと思っています。 現在　彼のピアノ作品に少しはまってます

パソコン初心者で、macbook（OS X 10.5.5）を使っています。 CotEditorやJeditXを使っているのですが（ともに最新ver.）、そのファイルに既に打ち込まれた文字数が多い場合、新たに文字を打つときの文字の表示速度が非常に遅くなってしまいます。 例えばCotEditorで、新規ファイルで「あああああああああああああ」と打ち込んだときと、文字数約300,000字が既に打ち込まれたファイルで「あああああああああああああ」と打ち込んだときでは、一文字一文字の「あ」の字の表示速度について、明らかに後者の表示速度が遅いです。 ちなみに、文字数が多く入力されているファイルでも、１行目に「あああああああああああああ」と入力した場合には表示速度が非常に遅いのですが、例えば5000行目（その行以下に書き込まれた文章はない）に「あああああああああああああ」と入力した場合には、文字表示はそんなに遅くありません。 打ち込んだ文字の表示速度が遅いのは非常にストレスを感じるので、何とかしたいのですが、何か方法はあるのでしょうか？

パソコン初心者で、macbook（OS X 10.5.5）を使っています。 CotEditorやJeditXを使っているのですが（ともに最新ver.）、そのファイルに既に打ち込まれた文字数が多い場合、新たに文字を打つときの文字の表示速度が非常に遅くなってしまいます。 例えばCotEditorで、新規ファイルで「あああああああああああああ」と打ち込んだときと、文字数約300,000字が既に打ち込まれたファイルで「あああああああああああああ」と打ち込んだときでは、一文字一文字の「あ」の字の表示速度について、明らかに後者の表示速度が遅いです。 ちなみに、文字数が多く入力されているファイルでも、１行目に「あああああああああああああ」と入力した場合には表示速度が非常に遅いのですが、例えば5000行目（その行以下に書き込まれた文章はない）に「あああああああああああああ」と入力した場合には、文字表示はそんなに遅くありません。 打ち込んだ文字の表示速度が遅いのは非常にストレスを感じるので、何とかしたいのですが、何か方法はあるのでしょうか？

macbook OSX 10.5.5 を使っています。 パソコン初心者です。 特定フォントの特殊文字（上に - の付いたaや、下に . のついたd、上に ~ のついたNなど）に対して、ショートカットキーを割り当てたい（上の例だと、option + a、option + d、option + shift + n、などのように割り当てたい）のですが、よいエディタなどはあるでしょうか？ windows を使用していた際にはMicrosoft Office Word でこのような特殊文字に対するキー割り当てが簡単にできたのですが、macに乗り換えてから同じことをOpenOffice やNeoOfficeで行おうとしても、そのような機能がなく、キー割り当てができません。 ちなみにCotEditor（バージョン0.9.2）では、「環境設定」の「キーバインディング」の「追加テキストキーバインディング」からこのような設定が可能なようですが……、CotEditor はキー設定をいじりたくないので、他のものがあるならばそちらを使いたいのです。 他のエディタやワープロソフトでも同じようなキーバインディングの設定が可能なものがあるならば、ぜひ教えてください。 仕事上絶対に必要なことなので、何卒よろしくお願いします！

macbook OSX 10.5.5 を使っています。 パソコン初心者です。 特定フォントの特殊文字（上に - の付いたaや、下に . のついたd、上に ~ のついたNなど）に対して、ショートカットキーを割り当てたい（上の例だと、option + a、option + d、option + shift + n、などのように割り当てたい）のですが、よいエディタなどはあるでしょうか？ windows を使用していた際にはMicrosoft Office Word でこのような特殊文字に対するキー割り当てが簡単にできたのですが、macに乗り換えてから同じことをOpenOffice やNeoOfficeで行おうとしても、そのような機能がなく、キー割り当てができません。 ちなみにCotEditor（バージョン0.9.2）では、「環境設定」の「キーバインディング」の「追加テキストキーバインディング」からこのような設定が可能なようですが……、CotEditor はキー設定をいじりたくないので、他のものがあるならばそちらを使いたいのです。 他のエディタやワープロソフトでも同じようなキーバインディングの設定が可能なものがあるならば、ぜひ教えてください。 仕事上絶対に必要なことなので、何卒よろしくお願いします！

基本的なことなのですが、わからないので教えてください。 あるショウジョウバエの論文で、Gal4-UASを用いてある神経細胞を染色していました。Gal4-A/UAS-mGFPでした。 同時にGal4に用いたエンハンサー(A)のmRNAをin situで観察していました。mGFPの発現部位は、その神経節全体なのですが、in situによる染色はその神経節の先端の細胞群と、少し離れたところの2箇所でした。 Gal4のエンハンサーに用いたAは神経節全体で観察されるのに、なぜmRNAは神経節の一部と違う領域で発現しているのでしょうか。 個人的な理解として、Gal4-UASで発現が見られる部位ではエンハンサーで活性化される遺伝子が必ず発現していると思うのですが・・・ということはmRNAも同時に発現している気がします。 どうぞよろしくお願いいたします。

パソコン初心者で、macbook（OS X 10.5.5）を使っています。 CotEditorやJeditXを使っているのですが（ともに最新ver.）、そのファイルに既に打ち込まれた文字数が多い場合、新たに文字を打つときの文字の表示速度が非常に遅くなってしまいます。 例えばCotEditorで、新規ファイルで「あああああああああああああ」と打ち込んだときと、文字数約300,000字が既に打ち込まれたファイルで「あああああああああああああ」と打ち込んだときでは、一文字一文字の「あ」の字の表示速度について、明らかに後者の表示速度が遅いです。 ちなみに、文字数が多く入力されているファイルでも、１行目に「あああああああああああああ」と入力した場合には表示速度が非常に遅いのですが、例えば5000行目（その行以下に書き込まれた文章はない）に「あああああああああああああ」と入力した場合には、文字表示はそんなに遅くありません。 打ち込んだ文字の表示速度が遅いのは非常にストレスを感じるので、何とかしたいのですが、何か方法はあるのでしょうか？

すみません、質問があります。 微生物がある酵素を産生する場合の至適温度が３０度で、５０度では産生しませんでした。 しかしその酵素の活性至適温度は５０度です。 このような差は何故起こるのでしょうか？ 産生した酵素をより効率よく使うには、両方の至適温度が同じくらいのほうが良い気がするのですが‥。 基本的な質問ですみません。 お答え頂けたら嬉しいです。

キアゲンマキシキットで、プラスミドの精製を行っているのですが、最近になって、アルカリ沈殿後のフィルターを通しても、白濁したままの液体がでてきてしまいます。トラブルシューティングもしたのですが、全く原因不明です。どなたか考察または助言をお願いします。

基本的なことなのですが、わからないので教えてください。 あるショウジョウバエの論文で、Gal4-UASを用いてある神経細胞を染色していました。Gal4-A/UAS-mGFPでした。 同時にGal4に用いたエンハンサー(A)のmRNAをin situで観察していました。mGFPの発現部位は、その神経節全体なのですが、in situによる染色はその神経節の先端の細胞群と、少し離れたところの2箇所でした。 Gal4のエンハンサーに用いたAは神経節全体で観察されるのに、なぜmRNAは神経節の一部と違う領域で発現しているのでしょうか。 個人的な理解として、Gal4-UASで発現が見られる部位ではエンハンサーで活性化される遺伝子が必ず発現していると思うのですが・・・ということはmRNAも同時に発現している気がします。 どうぞよろしくお願いいたします。

数年前からカリンニコフの交響曲第1番、第2番を聴いて すっかり気にいってしまいました。 ＮＡＸＯＳ盤でクチャルの指揮したものでした。 この第1番は日本で外国のオーケストラが 最初に演奏した曲ということで、由緒正しい曲なのです。 当時の日本人は、どんな思い出この曲を聞いたのでしょうか？ さて、その後ＡＲＴＥＮＯＶＡ盤（指揮者は忘れた）、ヤルヴィ盤 スヴェトラーノフ盤、アシュケナージ盤等を聴いてみました。 録音はアシュケナージのＥＸＴＯＮが優れていますが、 何度も聴いて飽きないのは、クチャル盤でした。 このロマンティックなメロディの良さを、素直に引き出し 金管を適度に鳴らした、ＮＡＸＯＳ盤は良く売れたらしいのですが なるほどと思いました。アシュケナージが期待はずれでしたので 新しい録音も待ちたいのですが、お奨めのＣＤは他に ないでしょうか？

お世話になっています。 免疫染色の際に、２次抗体後washまでは検鏡して細胞が形を保っているのに、その後乾燥させると細胞の形がなくなってしまうのは 固定がきちんとできていないのでしょうか？ 4%パラホルムアルデヒド／PBSは1年ほど前に作成して－20度保存の物を用事溶解して使っているのですが… 心当たりのある方アドバイスお願いします。

現在たんぱく質定量でウエスタンブロットをやっているのですが うまくいかず、意を決して質問することにしました。 検出はECL試薬を用いています。 サンプルはしっかりとバンドが検出されるのに、 ポジティブコントロールがうまく検出されません。 ポジティブコントロールとして100μg/mlになっているものを 10倍希釈（10μg/ml）ではかなり濃いバンドが現れるのですが 100倍希釈（1μg/ml）にするとほとんど見えません。 10倍希釈から100倍希釈になった途端にガクンとバンドの濃さが 薄くなってしまいます。 何度やってもポジティブコントロールだけが薄く、 最低でも1μg/mlぐらいまでしか見えないです。 通常、どのくらいが検出限界なのでしょうか？ 文献などで調べたところ、1μg/mlはありえないということはわかっているのですが、 実際に実験などで素人がやってみるとどのくらいなのか知りたいです。 サンプルはラインもキレイでいつもしっかりとバンドが現れることから ポジティブコントロールの希釈という基本的なところに問題がある のかとも考えています。 転写ムラや泳動ミスではないと思っています。 たんぱく質の種類にもよると思いますが 通常ポジティブコントロールは水溶性なら水で希釈するものなのでしょうか？ 何も考えずPBSで希釈を行っていましたがそれがポジコンの検出感度低下を招いているのでしょうか？ とても基本的な質問でお恥ずかしいのですが かなり追い詰められた状態でこちらに書き込みさせていただきました。 少ない情報のみで大変申し訳ないのですが どんな細かいことでもかまいませんのでたくさんの回答をお待ちしています。 どうかよろしくお願いします。

現在たんぱく質定量でウエスタンブロットをやっているのですが うまくいかず、意を決して質問することにしました。 検出はECL試薬を用いています。 サンプルはしっかりとバンドが検出されるのに、 ポジティブコントロールがうまく検出されません。 ポジティブコントロールとして100μg/mlになっているものを 10倍希釈（10μg/ml）ではかなり濃いバンドが現れるのですが 100倍希釈（1μg/ml）にするとほとんど見えません。 10倍希釈から100倍希釈になった途端にガクンとバンドの濃さが 薄くなってしまいます。 何度やってもポジティブコントロールだけが薄く、 最低でも1μg/mlぐらいまでしか見えないです。 通常、どのくらいが検出限界なのでしょうか？ 文献などで調べたところ、1μg/mlはありえないということはわかっているのですが、 実際に実験などで素人がやってみるとどのくらいなのか知りたいです。 サンプルはラインもキレイでいつもしっかりとバンドが現れることから ポジティブコントロールの希釈という基本的なところに問題がある のかとも考えています。 転写ムラや泳動ミスではないと思っています。 たんぱく質の種類にもよると思いますが 通常ポジティブコントロールは水溶性なら水で希釈するものなのでしょうか？ 何も考えずPBSで希釈を行っていましたがそれがポジコンの検出感度低下を招いているのでしょうか？ とても基本的な質問でお恥ずかしいのですが かなり追い詰められた状態でこちらに書き込みさせていただきました。 少ない情報のみで大変申し訳ないのですが どんな細かいことでもかまいませんのでたくさんの回答をお待ちしています。 どうかよろしくお願いします。

タンパク質の構造について勉強をしているのですが、 いろんな本などをみてもいまいちわからなくて、質問させていただきます。 タンパク質はアミノ酸によって構成されていますが、 そのなかで極性アミノ酸(極性残基)、芳香族アミノ酸(芳香族残基)などがあります。 その極性アミノ酸と芳香族アミノ酸とではどう違うのでしょうか？

現在たんぱく質定量でウエスタンブロットをやっているのですが うまくいかず、意を決して質問することにしました。 検出はECL試薬を用いています。 サンプルはしっかりとバンドが検出されるのに、 ポジティブコントロールがうまく検出されません。 ポジティブコントロールとして100μg/mlになっているものを 10倍希釈（10μg/ml）ではかなり濃いバンドが現れるのですが 100倍希釈（1μg/ml）にするとほとんど見えません。 10倍希釈から100倍希釈になった途端にガクンとバンドの濃さが 薄くなってしまいます。 何度やってもポジティブコントロールだけが薄く、 最低でも1μg/mlぐらいまでしか見えないです。 通常、どのくらいが検出限界なのでしょうか？ 文献などで調べたところ、1μg/mlはありえないということはわかっているのですが、 実際に実験などで素人がやってみるとどのくらいなのか知りたいです。 サンプルはラインもキレイでいつもしっかりとバンドが現れることから ポジティブコントロールの希釈という基本的なところに問題がある のかとも考えています。 転写ムラや泳動ミスではないと思っています。 たんぱく質の種類にもよると思いますが 通常ポジティブコントロールは水溶性なら水で希釈するものなのでしょうか？ 何も考えずPBSで希釈を行っていましたがそれがポジコンの検出感度低下を招いているのでしょうか？ とても基本的な質問でお恥ずかしいのですが かなり追い詰められた状態でこちらに書き込みさせていただきました。 少ない情報のみで大変申し訳ないのですが どんな細かいことでもかまいませんのでたくさんの回答をお待ちしています。 どうかよろしくお願いします。